En este número:

Nota del Editor   

Muchas veces hemos escuchado acerca de la importancia de la oxigenación radicular en sistemas hidropónicos, pero seguramente, las respuestas que hemos recibido no han sido del todo satisfactorias, quedando  todavía alguna inquietud.  En este número tenemos la oportunidad de conocer de una manera más técnica y científica sobre el rol de la oxigenación para lograr un buen manejo hidropónico, ya sea en sistema en agua o en sustrato. Por ello queremos agradecer a nuestra amiga y colaboradora, la Dra. Lynette Morgan de Nueva Zelanda, quien nos explica todo esto en su artículo:  “¿Se están sofocando sus plantas?”.  Asimismo agradecer la colaboración de la revista Practical Hydroponics & Greenhouses de Australia (http://www.hydroponics.com.au); a través del  Sr. Steven Carruthers, su editor. 

Queremos agradecer a todas aquellas personas que nos han apoyado adquiriendo un ejemplar del Manual Práctico de Hidroponía.  Esta ayuda nos permite mantener nuestro trabajo de investigación y continuar con la edición del Boletín Informativo.  La primera edición se agotó mucho antes de lo previsto y pronto aparecerá la segunda edición que ya está en imprenta.  

Por otro lado, no se olviden que del 6 al 8 de Agosto de este año dictaremos el 4º. Curso Práctico Internacional de Hidroponía, y es una oportunidad para aprender la técnica con nosotros y, a la vez, conocer los bellos lugares que tiene nuestro país como Machu Picchu. 

Alfredo Rodríguez Delfín
Editor

Artículos Científicos

¿SE ESTAN SOFOCANDO SUS PLANTAS? 

La importancia del oxígeno en  hidroponía.
El oxígeno disuelto es algunas veces el ingrediente que olvidamos en la solución nutritiva.
Lynette Morgan
Practical Hydroponics & Greenhouses No 52

INTRODUCCION 

La pobre oxigenación y la inundación del sistema radicular, en hidroponía, raramente produce síntomas llamativos en el cultivo pero sí una disminución en el crecimiento y rendimiento.  Mientras medimos cuidadosamente el cF (factor de conductividad eléctrica) y pH, pocos son los productores que miden los niveles de oxígeno disuelto (O₂) en sus sistemas de producción. 

La porosidad de muchos sustratos  está bien documentada, lo cual indica al productor la cantidad de oxígeno que penetra desde el sustrato hasta la zona radicular; pero en los sistemas basados en NFT, los sustratos se descomponen o compactan debido a la poca aireación.  El oxígeno es vital para el funcionamiento radicular y de la planta, muchos cultivos no reciben el máximo de oxigenación dentro del medio de cultivo o en soluciones NFT.  Para asegurar que el cultivo no se “sofoque” por la carencia de oxígeno, primero es necesario comprender algunas características de este gas y cómo puede influenciar su presencia en el sistema radicular.  

OXIGENO – UN REQUERIMIENTO ESENCIAL 

El requerimiento de oxígeno por la planta se conoce desde 1968 y algunos estudios fueron escritos en la década de los 20’s (Clements, 1921).  Sin embargo, no fue hasta el desarrollo de los sistemas hidropónicos comerciales, en particular el NFT, que se hicieron observaciones detalladas sobre el efecto del oxígeno disuelto en la solución, el cual se provee a las plantas con los nutrientes y el agua.  El sistema radicular requiere oxígeno para la respiración aeróbica, un proceso esencial que libera la energía requerida para el crecimiento radicular. 

Raíces saludables, con buen suministro de oxígeno, son capaces de absorber más selectivamente los iones de la solución.  La energía  metabólica que es requerida para este proceso es obtenida de la respiración radicular, la cual es inhibida por la falta de oxígeno.  Puede haber una pérdida neta de iones en sistemas radiculares anaeróbicos (Jackson, 1980).  A pesar de esto, las investigaciones han indicado que en NFT, una gran porción de raíces necesitan ser anaeróbicas antes que los brotes pierdan nitrógeno, fósforo y potasio via sistema radicular (Jackson, 1980).  Sin embargo, hay una excepción que tiene mayor implicancia para una producción comercial y ésta es el calcio (Ca).  El calcio, a diferencia de los otros nutrientes, es absorbido por los “ápices radiculares no suberizados” (puntos de crecimiento).  El ápice radicular tiene una gran demanda de energía para la producción y crecimiento celular y, por lo tanto, es vulnerable a la carencia de oxígeno.  Si las raíces apicales que están en incremento sufren una deficiencia de oxígeno , una escacez de calcio aparece más rápidamente en los brotes.  Debido a que el calcio no se mueve rápidamente desde las partes más viejas a las más jóvenes, las regiones más sensibles serán los puntos de crecimiento con bajas tasas de transpiración (tales como los ápices de las hojas y frutos); esto produce desórdenes como quemadura de puntas (tip burn) y pudrición apical (blossom-end rot) y son más severos ante la falta de oxígeno. 

Sin embargo, se ha demostrado que muchos cultivos comerciales pueden sobrevivir y producir en una solución con concentraciones de oxígeno más bajas que las del aire que rodea las hojas; el agotamiento de oxígeno en soluciones estancadas es tóxico para casi todas las plantas.  Cuando no se detecta oxígeno en la zona radicular, entonces se dice que existe “anoxia” o condiciones “anaeróbicas”.  En el reino vegetal pocas son las especies que pueden tolerar condiciones de anoxia, el más notable es el arroz y especies silvestres de ambientes húmedos.  El mangle, por ejemplo, puede transportar oxígeno al sistema de raíces inundadas via raíces que crecen hacia arriba fuera del agua.  Sin embargo, la mayoría de los cultivos no caen dentro de esta categoría y se producen efectos severos cuando los niveles de oxígeno son bajos.  Aprender a reconocer los síntomas producidos por condiciones anaeróbicas (a nivel radicular) es importante para cualquiera que esté involucrado en hidroponía, los síntomas producidos por baja oxigenación frecuentemente son atribuidos a otras fuentes. 

SINTOMAS DE LA FALTA DE OXIGENO 

El daño por carencia o poca cantidad de oxígeno en la zona radicular tiene muchas formas, éstas difieren en la severidad entre especies.  Frecuentemente, el primer signo de una inadecuada oxigenación es el marchitamiento de la planta durante el medio día, cuando los niveles de temperatura y luminosidad son los más altos. 

La falta de oxígeno reduce la permeabilidad de las raíces al agua y habrá una acumulación de toxinas; así el agua y los minerales no pueden ser absorbidos en cantidades suficientes para el crecimiento bajo condiciones de estrés.  Este marchitamiento está acompañado por una disminución en la fotosíntesis y transferencia de carbohidratos; por lo tanto el crecimiento de la planta es reducido y el rendimiento se verá afectado.  Si la falta de oxigenación continua, las deficiencias comenzarán a manifestarse, las raíces morirán y la planta no desarrollará.  Si las condiciones anaeróbicas continúan, se produce una hormona de estrés: el etileno , el cual se acumula en la raíces y sus células colapsan.  Una vez que ha comenzado el deterioro de la raíz, provocado por la anaerobiosis, los patógenos oportunistas como el Pythium pueden entrar rápidamente a la planta y destruirla.  Bajo condiciones de suministro de oxígeno marginal, aparentemente las plantas no sufren; sin embargo, el efecto en la absorción de agua y minerales y el transporte desde una zona radicular poco oxigenada puede producir un incremento de desórdenes fisiológicos en algunas especies tales como quemadura de puntas y pudrición apical. 

Otro efecto de falta de oxígeno más visible y prolongado, el cual ocurre en cultivos inundados , es la hoja “epinástica”. Por la falta de oxígeno, las plantas son inducidas a incrementar la producción de etileno.  La anaerobiosis del sistema radicular puede ser suficiente para elevar la síntesis de etileno en los brotes de tomate  causando la epinastía (Bradford y Fa Yand, 1981).  La epinastía es la curvatura hacia debajo de las hojas, lo que da a la planta una apariencia de marchitez.  Si la falta de oxígeno continua y es severa habrá clorosis de las hojas (amarillamiento), abscisión prematura de hojas y flores.  La hormona responsable del envejecimiento prematuro y abscisión de la hoja es el “ácido abscísico”, el cual se ha demostrado que está presente en grandes cantidades si la raíz está inundada (Jackson, 1980).  En casos no severos, frecuentemente en plantas de tomate, se producen raíces adventicias en la parte inferior del tallo y una hinchazón en la base; la planta trata de sobrevivir en condiciones inferiores a las ideales.  En tomate, si el estancamiento del agua continua, se formarán raíces adventicias en la parte inferior del tallo y alrededor de la parte superior del sistema radicular (sobre la línea de agua o condiciones de inundación), en un intento de regenerar un sistema radicular que está parcialmente muerto.  De esta forma, las plantas pueden “recuperarse” del estancamiento de agua y continuar creciendo.   

Los niveles de oxígeno en este cultivo de tomate varía desde 4,5 % en el inicio del canal y cae a 1,8 % en la última planta de la hilera a una temperatura de 20^oC.  

Frecuentemente el examinar la raíz no es un buen indicador si la planta está sufriendo de falta de oxígeno.  Examinando la masa radicular en un canal de NFT, es posible ver cuanto del sistema radicular está realmente sumergido y que porción está sobre el nivel de la solución, pero la salud del sistema radicular puede ser difícil de determinar.  Algunas veces el productor asume que una masa de raíces blancas y gruesa es signo de buena salud;  sin embargo, una masa de raíces marrones y delgadas en un cultivo casi maduro es normal y no necesariamente significa enfermedad o falta de oxígeno.   

En una planta de tomate con crecimiento vegetativo, se forma rápidamente una masa radicular de 2 a 3 cm de profundidad extendiéndose en el fondo del canal.  En cultivos de largo periodo vegetativo como el tomate y pepinillo, esta condición no es continua.  Una vez que la planta comienza a florear, las raíces se tornan ligeramente oscuras y algunas mueren.  Este patrón de muerte progresiva ha sido ampliamente reportado como la secuencia normal del crecimiento del tomate cultivado en el suelo y otras especies.  Conforme pasa el tiempo, nuevas raíces crecen rápidamente pero esta pérdida de raíces y cambio de apariencia es común pero no es necesariamente un resultado de la falta de oxígeno, aunque las condiciones anaeróbicas lo empeora (Hurd, 1978). 

¿DE DONDE OBTIENEN EL OXIGENO LAS RAICES? 

Normalmente asumimos que las raíces de un sistema NFT obtienen oxígeno de la solución nutritiva y quizás algo del aire donde la masa de raíces no está sumergida.  En una situación ideal de NFT se tiene una película delgada de solución (1 mm) fluyendo a lo largo del canal, esto permite que la mayor parte de raíz se situe sobre el líquido.  Las raíces expuestas a la humedad del aire pueden utilizar el oxígeno del aire como éste se difunde desde el aire a la delgada película de agua sobre la superficie externa de la raíz. 

Mientras que este es el objetivo del NFT, raramente esto ocurre en sistemas comerciales, en canales que tienen plantas maduras con una gruesa masa radicular.  Conforme la masa radicular aumenta de tamaño, longitud y densidad, el flujo de nutrientes se vuelve más lento y la altura del líquido aumenta, particularmente en canales más largos.  Existen  muchos cultivos con muy buenos rendimientos, en los cuales realmente tienen un flujo profundo de solución y una gruesa masa radicular dentro del canal.  La pélicula de nutrientes ideal se mantiene por pocas semanas, con plantas jóvenes, pero rápidamente tiende a volverse más gruesa conforme los canales se llenan de raíces.  Este tipo de flujo  profundo parece ser igual de ideal para condiciones de sofocación de la raíz; sin embargo, este no es el caso, muchos cultivos son DFT (Deep Flow Technique, técinca de flujo profundo). 

Las raíces de las plantas pueden absorber oxígeno de la interfase aire-agua lo cual ocurre en las raíces que se encuentran en la parte superior de la masa radicular, los sistemas radiculares tienen la habilidad de “especializarse”.  Esta situación existe en raíces expuestas a la humedad del aire, las cuales son altamente eficientes para absorber oxígeno de ese medio y las raíces sumergidas son también eficientes utilizando el oxígeno disuelto (también en concentraciones muy bajas) contenido en la solución.  La presencia de raíces en la parte superior o en el cubo de propagación, que se mantiene sobre el nivel  de la solución nutritiva, incrementa el crecimiento de la raíz así como la absorción de nutrientes y agua.  Si estas raíces aéreas especializadas son sumergidas súbitamente en la solución nutritiva, el crecimiento y funcionamiento de la raíz se reducirá.  Una investigación encontró que si las raíces superiores se sumergen y las inferiores se exponen al aire, ocurre rapidamente un marchitamiento y reducción en el crecimiento de la planta (Hurd, 1978). 

Además existen otras fuentes de oxígeno.  Primero, el oxígeno puede ser transportado dentro de la planta, la parte superior de la planta tiene acceso al oxígeno del aire y éste puede ser transportado hacia las raíces en caso de estrés.  Segundo, bajo condiciones de un inadecuado suministro de oxígeno externo, las tasas de absorción de nitrato y su reducción del tejido radicular tiende a aumentar, lo que provee una fuente interna de oxígeno atómico el cual puede ser utilizado en procesos metabólicos sustituyendo al oxígeno externo (Gilbert y Shive, 1942).  El oxígeno es liberado cuando las plantas reducen los iones nitrato absorbidos y este oxígeno está disponible para ser utilizado por las células vegetales (Pepkowitz y Shive, 1944). 

Sin embargo, las fuentes de oxígeno interno por sí solas son a corto plazo y no pueden proveer la suficiente cantidad de oxígeno requerido para sostener un buen crecimiento.  Esto problamente lo han desarrollado plantas que sufren breves periodos de estancamiento de agua en el suelo y no pueden proveer a largo plazo una solución a sus requerimientos  de oxígeno.  Son los pastos y SEDGES con sus tallos huecos capaces de transportar oxígeno desde las hojas hacia las raíces durante las inundaciones; esta es la razón por la cual muchos de ellos son tolerantes a las inundaciones que muchos de nuestros cultivos comerciales. 

LA DINAMICA DEL OXIGENO EN SOLUCIONES NFT 

Las soluciones nutritivas ofrecen oxígeno y agua a las plantas.  Si el sistema radicular está rodeado sólo por un flujo de aire, la oxigenación será plena debido a que la atmósfera contiene excelentes niveles de este gas.  Sin embargo, las raíces tambien requieren agua y ésta es desafortunadamente una barrera efectiva para la difusión de gases como el oxígeno, CO₂ y etileno; estos gases se mueven 12 000 veces más lento en el agua que en el aire. 

En el suelo o en un medio, el balance entre los poros que están llenos de agua o aire determinan cuan aireada están las raíces.  Si aproximadamente el 15% o más del medio contiene aire y poros interconectados, la aireación será la adecuada.  En la  práctica, la pérdida de la estructura del medio ocurre con el tiempo y la falta de oxígeno es común en sustratos base de los sistemas NFT ó DFT.   También la mayor parte de la raíz está sumergida y es la mayor barrera para el movimiento gaseoso entre las raíces y el aire.  Raíces gruesas también son más vulnerables a la falta de oxígeno,  ellas consumen más O₂ pero tienen menor área superficial para la absorción de gases.  Si la aireación no es adecuada para un sistema radicular, gases tales como el etileno y CO₂ que son productos de deshecho producidos por las raíces no pueden difundirse y se acumulan en la zona radicular. 

Si observamos un típico canal de NFT con un cultivo maduro de tomate, podemos ver cuán fácil se agotan los niveles de oxígeno sobre todo bajo condiciones cálidas.  Un sistema radicular de una planta de tomate madura necesita alrededor de 20 ml de oxígeno por hora para funcionar efectivamente.  Si el flujo promedio de la solución es de 1-2 litros por minuto, el suministro de oxígeno se agotaría en 20-40 plantas (Hurt, 1978).  Se asumen que todas las raíces están sumergidas y que la solución nutritiva no absorbe oxígeno del aire cuando atraviesa el canal.  Sin embargo, esta suposiciones no son del todo correctas, en realidad la raíz no está totalmente sumergida y tiene cierto porcentaje sobre el flujo de nutrientes y es capaz de absober oxígeno de la atmósfera por difusión a través de la película de humedad que cubre las raíces.  Cuánto del sistema radicular está realmente sumergido, depende de la pendiente, el ancho del canal y el efecto perjudicial para la raíz.  El oxígeno es absorbido conforme la solución atraviesa el canal, aunque la extensión depende del flujo promedio y el grado de turbulencia de la solución. 

Dentro del canal y de la masa radicular hay varias zonas que difieren en flujo, contenido y uso de oxígeno.  Una vez que la planta se ha establecido cubriendo la base del canal, el libre movimiento de la solución tiende a fluir por los bordes de la masa radicular, esto frecuentemente conduce a tener parches de agua estancada.  Los investigadores han reportado que canales con pendientes de 1 en 50, las áreas estancadas son menores que en canales con menor pendiente (Hurt, 1987).  Con canales con una pendiente de 1 en 100, las áreas con estancamientos de solución son más comunes. 

OXIGENACION EN EL DFT (Técina de Flujo Profundo) 

El sistema de flujo profundo (DFT) difiere del NFT en que la altura de la solución es mayor y se mantiene todo el tiempo y puede ser en un sistema de flujo o no.  Soluciones profundas tiene un mayor requerimiento de oxígeno y éste debe ser introducido manualmente ya que el sistema radicular se encuentra sumergido totalmente.  Frecuentemente se inyecta aire a la solución o se introduce nutrientes frescos a intervalos regulares a lo largo de las camas de cultivo.  Un estudio reportó que el agotamiento del oxígeno en la solución en un DFT está en función a la distancia del punto de aireación, así las plantas que estuvieron lejos de la fuente de aireación tuvieron menores niveles de oxígeno (Zeroni et al, 1983). 

¿QUÉ AFECTA AL CONTENIDO DE OXIGENO DE LA SOLUCION? 

Existen muchos factores que afectan el balance de oxígeno de la solución nutritiva, estos incluyen: la temperatura, la actividad metabólica del sistema radicular, el efecto de microorganismos y algas, manejo de la solución, introducción deliberada de oxígeno atmosférico y la tasa a la cual el oxígeno puede difundirse en la solución. 

El oxígeno y otros gases son solubles en agua, aunque en el agua saturada sólo una pequeña cantidad de oxígeno gaseoso estará disuelto en la solución nutritiva.  El agua pura (sin nutrientes) está en equilibrio con el aire que contiene alrededor de 9-10 ppm (mg/l) de oxígeno disuelto a 20°C.  Esta capacidad de transporte de oxígeno se reduce en presencia de sales, aunque los rangos de concentración de cF en los cuales se cultiva no tiene un gran efecto (sólo reduce la solubilidad del oxígeno en 0.2-0.4%).  En la naturaleza, el agua fría y fresca de los riachuelos tiene la habilidad de transportar más oxígeno que el agua de mar que contiene más sales. 

Más importante es el efecto de la temperatura sobre el potencial de la capacidad de transporte de oxígeno de la solución nutritiva.  Conforme se incrementa la temperatura, la cantidad de oxígeno disuelto decae rápidamente y esto tiene grandes implicancias para los sistemas hidropónicos.  Un incremento en la temperatura de la solución nutritiva de 20°C a 30°C reduce el contenido de oxígeno del agua saturada por el aire de 9.62 ppm a 7.8 ppm (mg/l).  Combinado a esto, estas temperaturas más altas incrementan al doble la tasa de respiración del sistema radicular por cada 10°C que se incrementa la temperatura hasta 30°C;  por lo tanto, podemos tener la siguiente situación: la temperatura se incrementa de 20°C a 30°C en una tarda calurosa, un cultivo maduro y un sistema radicular grande.  Los requerimientos de oxígeno son el doble, mientras que la capacidad de transporte de oxígeno decae al 20%, esto significa que el oxígeno en la solución se agota más rápido y la planta puede sufrir falta de oxígeno por algún tiempo.   

Este problema de baja oxigenación a altas temperaturas y un incremento en los requerimientos de la raíz, también puede ser  exacerbado por la presencia de microorganismos en la solución y que compiten con las raíces por el oxígeno.  Prácticamente todos los sistemas hidropónicos tienen una gran población de microorganismos, la mayoría son inofensivos o benéficos pero algunos no lo son.  Sin embargo, los sistemas saludables contienen un balance de microorganismos que viven sobre la materia orgánica de la solución.  Esta materia orgánica está en forma de carbono respirable que puede derivar de raíces muertas o heridas y también de raíces saludables que pueden exudar hasta un 18% de productos fotosintéticos (Jackson, 1980).  Estos microorganismos compiten con las raíces por oxígeno.  El oxígeno utilizado por los microorganismos es sólo una fracción de lo que requiere la masa radicular saludable y la competencia es realmente pequeña (ver Cuadro 1). 

Cuadro 1: Cálculos del suministro y consumo de oxígeno en una solución NFT a varias temperaturas en una planta de tomate en floración del primer racimo.

Temperatura °C 

El Cuadro 1 muestra la importancia de la temperatura de la solución nutritiva.  A 10°C, el oxígeno contenido en la solución requiere que se renueve dos veces por hora y a 30°C doce veces por hora.  Esto significa que no podemos hacer que la solución contenga más oxígeno a niveles de saturación, entonces la única opción disponible es asegurar que los flujos promedio en cada canal sean suficientes y que la solución sea renovada con la frecuencia requerida por hora para que los niveles de oxígeno no decaigan para arriesgar las plantas.  Incrementar los flujos promedio conforme la temperatura aumenta es una forma pero no es realmente práctico en un sistema comercial.  Una mejor opción es asegurar que las tasas de flujo sean lo suficientemente altas para soportar los requerimientos de renovación de oxígeno durante las horas más cálidas del día.   

A pesar de tener acceso a los datos presentados en el Cuadro 1, la única forma exacta para probar la adecuada oxigenación, en cualquier sistema hidropónico, es medir los niveles de O₂ disuelto con el uso de un medidor portátil.  Los investigadores han demostrado que a  bajos flujos de nutrientes (menos de 2 litros por minuto), las concentraciones pueden caer sustancialmente , este es otro factor que se debe tomar en cuenta cuando observamos las lecturas de oxígeno en un sistema hidropónico. 

Los microorganismos no son la única forma de vida presente en la solución nutritiva.  Las algas contienen clorofila (pigmento verde) y realizan fotosíntesis en presencia de luz, este proceso libera oxígeno en la solución.  Mientras que en hidroponía apuntamos a preveer la penetración de la luz y así el crecimiento de algas, muchos sistemas tienen algas en cierto grado.  Parace ser que el tener algas en la solución y en presencia de luz enriquece la solución.  El mismo efecto ocurre en ecosistemas naturales que tienen un gran número de algas y plantas acuáticas, los niveles de oxígeno disuelto son altos durante el día cuando las plantas están fotosintetizando pero decae rápidamente en la noche y a niveles muy bajos antes del amanecer.  A parte de otros problemas que pueden causar las algas, el agotamiento del oxígeno durante la noche significa que grandes poblaciones no son deseadas en ningín sistema hidropónico.   

Continuara en el Boletin 12....


HIDRONOTICIAS 

CURSO A DISTANCIA DE HIDROPONIA 
Amadeo Belaus, Argentina  

El Instituto Fiturgia: Arte y Trabajo en Cultivos Vegetales, Buenos Aires, Argentina, viene ofreciendo un curso a distancia de hidroponía titulado: "Cultivos sin suelo. Logre en reducido lugar una alta productividad".  El curso contiene 12 capítulos y puede ser desarrollado durante sus horas libres en cualquier lugar donde Ud. se encuentre. Para mayor información, escribir al e-mail: abelaus@cvti.com.ar

     

CONCURSO: DESAFIO TOMATE 2001 
Otmar Silberstein, EEUU 

Si alguno está interesado en participar en el desafio para producir tomate hidropónico, puede inscribirse en la siguiente dirección web donde aparecen las reglas del concurso: http://www.boazalabama.net/Hydroweb/challenge.htm 

Habrán dos concursos; el primero será del 21 de Marzo al 21 de Setiembre del 2001 para el Hemisferio Norte, y el segundo será del 21 de Setiembre del 2001 al 21 de marzo del 2002 para el Hemisferio Sur.  Todos están invitados a participar en este concurso. La razón de los dos concursos es un esfuerzo para hacerlo favorable a todo el mundo. 

Disculpen porque no habrá fabulosos premios en efectivo, vacaciones, pero los ganadores serán premiados con el  Certificado correspondiente.  Los certificados serán entregados de acuerdo a las siguientes categorías: 

El tomate más grande
La planta de tomate más alta
El mejor rendimiento por planta (peso)
El sistema más innovador
El peor tomate 

Las plantas no deben ser colocadas en los sistemas antes de Marzo 21.  Desde este punto cualquier cosa está corriendo; utilice cualquier sistema, fertilización, etc.   

CURSO INTERNACIONAL DE HORTALIZAS EN ISRAEL 
Alfredo Rodríguez Delfín, Perú 

El gobierno de Israel a través del Centro Internacional de Cooperación Internacional del Ministerio de Relaciones Exteriores (MASHAV) y el Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural a través de su Centro Internacional de Cooperación de Desarrollo Agrícola (CINADCO), llevó a cabo el Curso Internacional "Producción Intensiva de Hortalizas bajo diferentes Condiciones de Crecimiento".  El curso fue dictado en inglés y se realizó del 16 de Enero al 12 de Febrero en el kibbutz Shefayim, a 20 Km. al norte de Tel Aviv.  

Israel está ubicado en el Medio Oriente, sus costas están bañadas por el Mar Mediterráneo; por el norte limita con Líbano; por el este con Siria y Jordania y, por el sur con Egipto.  El país es pequeño en tamaño, aproximadamente tiene una superficie de 20,500 Km2, con una población de 6 millones de habitantes, de los cuales el 81% son judíos, el 17% son árabes musulmanes, y el 2% son cristianos. 

El gobierno de Israel otorgó 30 becas de estudio para participantes de 20 países: Albania, China, Egipto, Etiopía, Filipinas, India, Kenya, Macedonia, Myanmar, Nigeria, Perú, Polonia, Rumania, Sri Lanka, Tailandia, Turquía, Uganda, Ucrania, Vietnam y Zimbawe.    

Tuve la suerte de ser uno de los becados.  El curso fue muy bueno y se lo recomiendo a todas aquellas personas que están involucradas de alguna manera en la enseñanza, extensión o producción agrícola y que desean conocer y aprender acerca del desarrollo tecnológico logrado por los israelíes en agricultura.  Proximamente se  realizará un curso similar en español en Octubre y Noviembre de este año; mayor información  puede ser solicitada en la embajada de Israel de cada país o escribir al siguiente e-mail: Ashefaye@netvision.net.il. 

Los temas tratados han sido muy interesantes, temas como: producción de fresa, tomate, pimiento y pepinillo; fertirrigación, métodos de riego, sustratos, manejo post cosecha, tecnología de invernaderos, entre otros.    

El curso fue enriquecido con visitas a diferentes compañías agrícolas involucradas en el desarrollo agrícola de Israel. Se pudo apreciar el alto grado tecnológico en diferentes invernaderos. En la mayoría de invernaderos visitados la producción se realiza bajo cultivo sin suelo. Israel es el quinto país en el mundo con 1,000 hectáreas de cultivos sin suelo: 600 hectáreas cultivadas con flores, 220 hectáreas con hortalizas, y 120 hectáreas con plantas ornamentales.   

Como parte del curso, se hicieron visitas a invernaderos con producción de flores, plantas ornamentales, plantas aromáticas y hortalizas.  Las principales hortalizas que se producen bajo cultivo sin suelo son: tomate, pimiento, melón, pepinillo, fresa y sandía.     

CURSOS  FAO DE  CAPACITACIÓN  PRODUCTIVA HIDROPONICA 
Alvaro Sánchez Cortazzo, Uruguay 

Estimados amigos de Red Hidroponía, para mí es un gran gusto poder estar con Uds nuevamente para presentarles la presente nota de prensa sobre  hidroponía en Uruguay.

Todo comenzó a principios del año pasado, cuando el Oficial Regional de la FAO en Producción Vegetal, Dr Juan Izquierdo, fue invitado por el Rotary Club de Maldonado para disertar sobre hidroponía. De esta forma  comenzó a generarse una constructiva inquietud por parte de las autoridades del Rotary para dictar e implementar tres cursos de hidroponía.  Los dos primeros cursos se dictaron en Octubre y el último en Noviembre.  

El dictado de los curso fue posible gracias a la acción tripartita entre el Rotary Club de Maldonado, la Oficina de la FAO en el Uruguay y la Dirección Nacional de Empleo del Ministerio de Trabajo y Seguridad Social del Uruguay. 

Cada curso duró tres días consecutivos, con 8 ½ horas por día. El programa teórico-práctico, siguió la metodología de la FAO, del mismo modo como se ha hecho en diferentes países de América Latina y el Caribe a través de la Oficina Regional de la FAO.  

Se capacitaron 67 personas entre hombres y mujeres; las edades fluctuaron entre los 23 y 42 años, estando presentes también, y por suerte, personas con más de 50 años, inclusive varios jubilados, quienes buscaban una posible fuente alternativa de ingreso y/o de autosustento.  

 
 Sala del Rotary Club de Maldonado donde se dictaron las clases teóricas  

Los objetivos del curso fueron, entre otros:  

• Capacitar en la técnica  para  producir  de  alimentos  vegetales para mejorar  la  cantidad  y  calidad  en  la  alimentación  familiar.

• Generar  nuevas  alternativas   de  trabajo  y  empleo para fortalecer  la  economía  familiar, generando  ingresos.

• Fomentar  la  microempresa  tanto  familiar  como cooperativa.

• Revitalizar  al  pequeño  predio rural a través de la reorientación productiva-tecnológica.

• Generar  y promover  actitudes  positivas  hacia  la gestión  comunitaria. 

Las escuelas, tanto públicas como privadas de la zona, visitaron la huerta hidropónica. En el mismo lugar se enteraron de la existencia de este tipo de técnica alternativa, y frente a la cual,  además de demostrar su asombro, pudieron tener una especie de clase teórica- práctica sobre conceptos de fisiología vegetal y química.   

También asistieron jóvenes pertenecientes a distintas ONG´s , así como varios medios de prensa escrita, televisada y oral, los cuales le dieron una buena trascendencia al hecho. 

Sin dudas que este tipo de impactos, tanto a nivel  individual  como social en general, no va a ser temporal, sino que por la importancia que esto causó, su duración en el tiempo será algo más que significativa. 

Esta iniciativa entre instituciones públicas, privadas e internacionales, trajo también como otro resultado positivo el otorgamiento de créditos para la formación de microempresas y/o  para microemprendimientos grupales. 

 Los créditos se otorgan con fondos propios del Rotary (Rotarac) luego de la evaluación y aprobación de un proyecto de viabilidad económica empresarial presentado por los futuros destinatarios del dinero.   

Este proceder fue tan bien recibido por los asistentes que, durante la entrega de los diplomas y, ante la presencia de las máximas autoridades del Rotary, del Ministerio y de la FAO, se otorgó el primer crédito de emprendimiento juvenil grupal con el objetivo de producir hidroponicamente. Los beneficiarios fueron un grupo de once jóvenes de escasos recursos y con problemas de inserción laboral.    

El cierre oficial de los cursos y la entrega de los diplomas y la concesión del primer crédito microempresarial, se realizó con la presencia de los Sres. Néstor González y Eduardo Martínez, Presidente y Secretario respectivamente del Rotary Club de Maldonado; de la Dra. María Carmen Ferreira, Directora de la Dirección Nacional de Empleo del Ministerio de Trabajo (DINAE); de la Sra. Guillermina Texeira, Representante de la FAO en Uruguay, el Dr Gabriel Rodríguez Márquez y el Sr Horacio Brugnini, también de la FAO y  mi persona.  Este acto se vió engalardonado con la presencia de todos los asistentes a los tres cursos acompañados de sus familares, rotarios colaboradores y los medios de prensa. 

Una Reflexión:                

Quiero agradecer a  todas aquellas personas que de una u otra forma han hecho posible el dictado de los Cursos FAO en este departamento del Uruguay, en especial, a los Sres. Rotarios de Maldonado por todo el incontable esfuerzo realizado, tanto humano como económico para que esta técnica de producción llegara  a manos de los que en verdad la necesitan y, de no haber sido por esta acción, quizás nunca la hubieran podido conocer. Incluyo también a la Representación de la FAO en el Uruguay, así como a su Oficial Regional de Producción Vegetal,  por haberme confiado el dictado de los cursos. Finalmente, a la Directora de la DINAE. 

Los cursos fueron totalmente gratuitos, no hubo secretos, donde se dieron varias fórmulas de la solución nutritiva, aparte de la formula oficial FAO.   Donde se mostró como se elaboraba la misma y donde se podían adquirir los elementos, cuales eran además sus posibles sustitutos en caso de carencia de alguno de ellos, para que servían cada uno, que rol cumplían dentro de la planta, etc.  

De esta forma se ha continuado, una vez más, con la desmistificación de esta formidable herramienta alimentaria y generadora de autoempleo familar que es la hidroponia, y por sobre todas las cosas, haciendo que la gente más humilde la pueda conocer sin tener que pagar  sumas de dinero prácticamente inalcanzables por ellos. Esto fue la mejor recompensa y beneplácito que he podido recibir como docente.   

 
Alumnos de uno de los cursos en clase práctica. 

 
Resultados del 1er Curso.  Las lechugas de 24 días después del trasplante. 
Al fondo, cama recién  armada correspondiente del 2do Curso.  

Y RESPONDEMOS....

A continuación presentamos algunas cartas enviadas por nuestros amigos hidropónicos.  Debido a la gran cantidad de consultas que nos hacen, agradeceremos que sus preguntas sean puntuales y precisas. Red Hidroponía se reserva el derecho de sintetizar el texto de las cartas

Encantado de ponerme en contacto nuevamente con Uds., En Enero  les envié una serie de inquietudes, les agradezco sus comentarios los cuales me resultaron de suma utilidad. Aquí les envio algunas fotos del cultivode albahaca para  ver si me pueden ayudar a determinar el problema. 

A mi modesto entender, me parece que el problema es una deficiencia de algún micronutriente;; he aumentado las aplicaciones foliares de Poly Feed, y ha mejorado.  Desde ya muy agradecido y hasta pronto.  Que a su disposición. 

Hugo Lares 
Argentina
hlares@cpcipc.org

De acuerdo a los síntomas que se observan en las fotos, el problema no sería de un sólo elemento. El color verde pálido y amarillo que se observa en casi todas las hojas es un problema de deficiencia de nitrógeno (hojas adultas) y hierro (hojas jóvenes). Las bordes de las hojas que se doblan hacia arriba o hacia abajo es un síntoma de deficiencia de cobre. La contracción de las nervaduras se explicaría por una deficiencia de calcio. Haga un corte transversal de la hoja y observe la nervadura central; si aparece alguna mancha marrón (necrosis) entonces es por falta de calcio. 

La aplicación de Poly Feed no resolverá el problema calcio. Se debe aplicar algún producto que aporte calcio de acuerdo a la dosis que se recomienda en la etiqueta del producto.  

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Me gustaría saber que pasa que no hay actualización de boletines desde diciembre me gustaría que me contestasen ya que soy un seguidor de sus boletines. Atentamente, 

J.L. Bautes
Argentina.
<jlbautes@interlap.com.ar>


El boletín informativo de Red hidroponía lo puede leer en nuestra nueva dirección web: http://www.lamolina.edu.pe/hidroponia .Agradeceremos se sirva dar esta información entre sus conocidos. 

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De verdad muchas gracias por su página.  Como persona neófita que desea iniciarse a manera de hobby con los hidropónicos, he encontrado de gran utilidad su información y ya he bajado los diez boletines y empiezo a ser un preguntón más.  Porque observo en muchas gráficas, por ejemplo en el boletín 9, fotografías de cultivo de lechuga que se realizan en una sola extensión en m²  y no en más niveles como el forraje , si lo que se pretende es aprovechar el espacio cúbico. Gracias

Ezequiel Serrano Collazos
Bucaramanga, Colombia
mazo100@hotmail.com
ezequielserrano@latinmail.com

En algunos países desarrollados, existen sistemas con varios niveles para cultivar hortalizas de hoja como la lechuga, pero las plantas tienen que ser iluminadas artificialmente. En el caso del forraje, si hay una buena iluminación natural, no es necesario aplicar luz artificial porque el tiempo de producción es de 12 a 15 días. 

Mediante el cultivo sin suelo, el número de plantas y los rendimientos por unidad de área siempre serán superiores a los que se obtienen con la agricultura tradicional.

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Les escribo desde Barranquilla Colombia. Ya he tenido contacto con Uds. por este medio y agradezco mucho su gentileza en contestarme en aquella ocasión. 

Hoy me motiva a escribir una situación particular que me inquieta. Como les comenté en aquella ocasión, hice un curso de hidroponía familiar con Roberto Rasch, donde obtuve mis primeros conocimientos básicos. Actualmente, casi un año después, estoy sin poder avanzar más de lo que quisiera debido a la falta de información que poseo acerca de algunos cultivos específicos, ya que Roberto se trasladó a los EEUU.
 
Tal como lo solicité una vez, vuelvo a pedir que por favor me envien toda la información posible por este medio, para mantenerme al día con las investigaciones y lograr un avance importante en el conocimiento y la aplicación de esta técnica sencillamente maravillosa. 

Deseo saber si conocen algún sitio que brinde capacitación formal en hidroponía por Internet, además de un sitio en el cual pueda encontrar las características fisiológicas de algunas plantas y aprender su manejo cultural.   Esto sería de gran ayuda para mí y para el grupo de compañeros que persistimos en la idea de tener en nuestra despensa los mejores y más frescos productos que se puedan disfrutar (lo digo con certeza puesto que ya los he probado). 

Agradezco a Uds. la ayuda que me puedan prestar, pero ante todo les agradezco ese interés por la naturaleza y el aprovechamiento de los recursos que aún nos quedan. Su amigo 

Henry Carrera Sánchez. 
Barranquilla, Colombia
hcarrera@acesco.com

Cualquier información sobre el manejo agronómico de algún cultivo específico que pueda conseguir en su país le puede ayudar en su proyecto de cultivar hidropónicamente ya que el manejo agronómico es similar, tanto en el suelo como en un cultivo sin suelo. Lo único que esta cambiando es el medio de crecimiento de las raíces y, por lo tanto, la forma de nutrición mineral de las plantas. 

Como se habrá dado cuenta durante todo este tiempo de aprendizaje, el conocimiento que uno gana con la práctica, es muy importante para lograr un buen manejo y rendimiento en los cultivos hidropónicos. En caso de que se le presente alguna dificultad durante el período del cultivo, no dude en escribirnos que desde aquí le podemos orientar y ayudar a través de este medio. 

Para mantenerse informado puede revisar el boletín informativo de Red Hidroponía que aparece trimestralmente en la Internet: http://www.lamolina.edu.pe/hidroponia  

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Un artículo en Internet sobre hidroponía me pareció muy interesante y útil ya que estoy buscando información para implementar un programa de hidroponía en una comunidad marginal de la ciudad de México llamada Chalco. 

He leído un poco sobre hidroponía y entiendo el principio básico, sin embargo, todavía no encuentro en ningún lugar información detallada sobre la preparación del líquido nutritivo; a qué niveles se recomiendan los nutrientes (ppm, %);  no se cómo se mide en una solución de este tipo, y cuáles son necesarios añadir a la solución para cultivar hortalizas en general. 

La comunidad es muy pobre y no se tiene el apoyo del gobierno para la implementación del programa. Los insumos que buscamos son idealmente de bajo costo.  

He oído que hay un programa de hidroponía que patrocina la UNESCO. Saben algo sobre este programa?  Me preguntaba si me pueden ayudar a aclarar estas dudas o si me pueden decir dónde encuentro información al respecto. Muchas gracias. 

Leslie Garrett 
Costa Rica
garrett@sol.racsa.co.cr 

En relación a bibliografía, puede consultar las revistas de Practical Hydroponics & Greenhouses (http://wwww.hydroponics.com.au) donde aparecen una serie de artículos interesantes para el productor hidroponico.

En relación a la preparación de la solución nutritiva, puede visitar nuestra página web en: http://www.lamolina.edu.pe/hidroponia Haga clic donde dice Soluciones. En este enlace tiene la información para preparar la solución nutritiva usando la solución hidropónica La Molina. Si no hay alguno de los ingredientes para prepararla en la localidad donde Ud. reside, entonces se podría formular una solución de acuerdo a sus necesidades. 

Del 26 al 28 de Abril en Toluca, México se llevara a cabo un Congreso y Curso Internacional de Hidroponía. Mayor información puede obtenerla en la página web: http://www.hidroponia.org.mx 

Algunos organismos internacionales como la FAO, PNUD, UNESCO han estado involucrados en alguna forma en proyectos de hidroponía. Actualmente la FAO viene ejecutando uno en Ecuador.

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Junto con saludarlos y felicitarlos por lo interesante de vuestra página, deseo pedirles información respecto de sus ensayos con frutillas en columnas de polietileno. Me interesa saber los tipos
de sustratos que han tenido mejor resultado, el tipo y concentración de la solución nutritiva; y si la altura
de las columnas no es demasiado grande. 

Por mi parte, les cuento que tiempo atrás hice una prueba en bolsas de 1 m, con aserrín de pino, aplicando la solución nutritiva de la FAO. Alcancé a cosechar algo de fruta pero era muy ácida, además las plantas comenzaron a mostrar sus hojas quemadas en los bordes hasta afectar totalmente la planta. Por favor, envíenme más información sobre el tema.   Sin otro particular, les saluda atte. 

Abelardo Villavicencio 
Chile
abelardo_cl@yahoo.com


El sustrato que debe utilizarse en sistema de columnas debe ser liviano; una opción en Chile es la perlita sola o mezcla de perlita con cascarilla de arroz. El aserrín contiene taninos y otras sustancias que, con el tiempo, se van liberando y haciendo disponibles a las plantas, afectando su crecimiento. Se puede usar aserrín pero en mezcla (20%). 

Los sustratos que hemos empleado fueron: pumecita sola, cascarilla de arroz sola; mezclas: pumecita con cascarilla (50:50 v/v), cascarilla con arena (50:50, 70:30). Los mejores rendimientos se lograron con pumecita sola. La solución nutritiva que empleamos es preparada con solución hidropónica La Molina con una mayor concentración en potasio, hierro, calcio y magnesio. La altura de una columna es de 2 m y es apropiada.  

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Es muy grato para mi encontrarme con organizaciones de personas que saben utilizar la tecnología y la ciencia en pro de objetivos sociales. Si bien es cierto que estoy embarcado en un proyecto
comercial de pequeña escala de cultivos hidropónicos, siempre ha estado en mis metas la de hacer llegar estas técnicas a los sectores más necesitados. Los felicito por abrazar esta manera de hacer las cosas que tan escasas están en estos días; tengan por seguro que por mi parte con lo que yo pueda cooperar lo haré encantado. 

Por otro lado me gustaría que me ayudaran con una parte de mi proyecto: necesito información sobre el cultivo de hierbas culinarias, tipos de hierbas, sistemas usados y/o personas con la cual me puedo contactar por este tema, además de la producción de FVH para ganado bovino.

Quedo muy contento de poder comunicarme con Uds. y pronto les daré mi comentario sobre vuestro Manual Práctico de Hidroponía. Muchas felicitaciones por el trabajo realizado.  Atentamente

Alejandro Barros Sandoval 
Proyecto Hydra 
Quillota, Chile 
abarros@zonaempresarial.cl

Existe una buena demanda de hierbas frescas cultivadas hidropónicamente, hierbas como orégano, albahaca, timo, mejorana, arúgula, menta, hierba buena, culantro, perejil, etc. Entre los sistemas usados están: NFT (albahaca, menta), raíz flotante (albahaca, menta, hierba buena, huacatay), columnas con macetas de poliestireno expandido (diferentes tipos de hierbas) y riego por goteo con sustrato (diferentes tipos de hierbas). Por lo general, las hierbas demoran algún tiempo para establecerse pero luego producen por más de seis meses. 

En relación a la producción de FVH, puede revisar los diferentes artículos y respuestas de las cartas que nos han enviado sobre el tema y que han aparecido en los diferentes números del boletín informativo de Red Hidroponía.  

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Soy una estudiante de la Universidad Politécnica de Huesca, España. Curso la especialidad de explotaciones agropecuarias y estoy muy interesada en estudiar hidroponía. Los recursos sobre este tema son muy escasos en mi país y, encontrar artículos sobre hidroponía en el desarrollo de
ciertas plantas medicinales resulta complicado. Intento buscar un libro que me explique detalladamente cómo debo realizar la instalación; cuáles son los mejores métodos para seleccionar el sustrato, y los
diferentes tipos de riego de los que debo disponer. Me gustaría conocer también el cultivo en aeroponía y semihidroponía.

También me esta resultando difícil encontrar tablas o libros sobre las  necesidades minerales y las condiciones climáticas de algunas plantas medicinales como: Calamo aromatico, Salvia officinalis, Salvia divinorum, Mentha piperita, Thymus vulgaris, Arnica montana, Aloe vera, Cincoenrrama, Gayuba, etc.
He estado revisando vuestra página en Internet y me preguntaba si podrían  mandarme algo de información sobre este tema, además de compraros el libro que teneis expuesto a la venta " Manual Práctico de Hidroponía ". Gracias por vuestra atención. Un saludo : 

Conchita Sánchez Lardies
Huesca, España
429207@cepsz.unizar.es
Claviceps2000@yahoo.com

Si es posible cultivar plantas medicinales con sistemas hidropónicos y semihidropónicos. El sistema de raíz flotante funciona bien para cultivar menta y otras plantas similares. El sistema semihidropónico mayormente utilizado es el de riego por goteo. Sustratos como la perlita, arena, fibra de coco entre otros, pueden ser utilizados en España. Lo importante es utilizar sustratos de bajo costo. El sustrato puede ser colocado en camas o contenedores hechos con cartón plastificado. Para fines comerciales el sistema aeropónico no es rentable pero puede ser utilizado con fines decorativos. 

Existen diferentes libros sobre hidroponía, específicamente sobre hortalizas y no sobre plantas medicinales. Cualquier libro sobre el manejo y producción de plantas medicinales le puede servir ya que estas actividades son similares en un cultivo en suelo y sin suelo; la principal diferencia entre ambos sistemas de producción está en el manejo de la nutrición mineral de las plantas, siendo más eficiente en un sistema hidroponico. 

Un artículo de interés para Ud. es: "Producción de Plantas Medicinales en Invernadero en el Noreste de Canadá" (en ingles) de la Dra. Martine Dorais del Centro de Investigación de Harrow, Canadá (doraisma@EM.AGR.CA), el cual debe aparecer en la próxima edición del libro memoria del Congreso Mundial de Cultivo Sin Suelo realizado en Israel en Mayo del 2000.  También puede consultar nuestro Manual Practico de Hidroponía que indica la metodología para instalar los sistemas y manejar los cultivos apropiadamente. 

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Deseo en primer lugar, felicitarlos y agradecerles la información que, sin afán de lucro hacen disponible. Asimismo, solicito me faciliten la dirección del Sr. Carlos Arano de Argentina, ya que hace dos años me  contacté con él y me hizo el favor de darme información acerca del FVH, pero perdí contacto con él. Es seguro que no se acuerde de mí, pero deseo saludarlo. Empecé a hacer pruebas de FVH y deseo continuar con ellas en breve.  Quedo a sus órdenes y me da gusto saludarlos. Muchas gracias,

Jaime Timoteo González, Saltillo
Coahuila, México. 
jatim@att.net.mx

Gracias por sus palabras. El e-mail del Lic. Carlos Arano es: c.arano@bigfoot.com  

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Estoy interesado en el Artículo del Boletín No. 4 "Sistema de Cultivo en Columnas", pero no es posible acceder el resto de la información. 

Actualmente racopio información sobre cultivo de fresas en columnas, ¿me podrían recomendar algún sitio web o referencias bibliográficas ?   Tengo la posibilidad de construir torres hidropónicas similares a las de Venezuela http://www.geocities.com/etxebar/ que poseen 252 plantas en 9 niveles, bajo Invernadero. 

Estos son los datos del lugar donde se colocaría el invernadero: área del terreno: 18 m x 33 m; (594 m² )

La localización del terreno hace que únicamente los vientos tropicales de verano (Mayo a Noviembre) y los de invierno (relacionados con frentes fríos) lo recorran siempre a lo largo.  

Bajo estas condiciones, ¿es posible cultivar fresas?. Agradeceré mucho su orientación y/o ayuda. 

J.Jesús González 
Veracruz, México. 
jjgonzalezf@ptq.pemex.com
 
Estamos adjuntando un archivo con el artículo solicitado. En 594 m² pueden instalarse aproximadamente unas 400 columnas. En caso utilizara macetas de termopor (poliestireno expandido), cada columna formada por 10 macetas, tendría  40 plantas (4 plantas/maceta y una por esquina) (Total 16,000 plantas).

El cultivo de fresa requiere temperaturas relativamente frías (14-16^o C). El frió es indispensable para inducir floración. Para los cultivos que tienen algún tipo de respuesta termoperiódica, como es el caso de la fresa, son más importantes los ciclos diarios de las temperaturas nocturnas. La temperatura nocturna lo puede obtener a través de la siguiente fórmula: T^o min - ¼ (T^o max. - T^o min). De acuerdo a los valores de temperaturas registradas, la temperatura nocturna sería 16,2^o C. El período de inducción de frió correspondería a los meses de Octubre a Marzo. Por lo tanto si es posible cultivar fresa bajo tales condiciones.

Por otro lado, el registro de precipitación indicaría que las condiciones serían húmedas, lo cual favorece la proliferación de hongos como Botrytis. Se deberá cuidar que este hongo no prolifere de lo contrario tendría fuertes pérdidas en la producción

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Les agradeceré cierta información sobre nutrientes.  En Panamá, con alguna diferencia a la fórmula del libro Manual Práctico de Hidroponía, se consigue Fetrilon Combi 1 con los siguientes componentes: Mo  0.1%,  B  0.5%,  Zn 1.5%, Cu 1.5%, Mn 4.0%, Fe 4.0%, Mg  5.4%.

El super fosfato triple de calcio ltine como ley  46% P₂O₅ y 13.6% Ca., y el quelato de hierro 8% Fe. Agradeceré sus consejos

Ing. Francisco Javier Oviedo
Nata, Panamá
fjoviedos@cwpanama.net

El compuesto Fetrilom Combi 1 que ha conseguido en su país es el mismo que hasta hace poco usábamos aquí para preparar la solución concentrada B (12 g de Fetrilomb para 2 litros de agua). Para bajar costos de la solución nutritiva, ahora usamos diferentes sales para obtener los micronutrientes: (4.5 g cloruro de manganeso, 3.0 g acido borico, 1.7 g sulfato de zinc, 1.0 g sulfato de cobre y 0.2 g molibdato de amonio, todo esto para un volumen final de UN LITRO de agua; sólo se usa 0.4 litros de esta solución de micronutrientes para preparar 2 L de solución concentrada B).

Para mantener la misma concentración de hierro en la solución nutritiva (1 ppm Fe), pesar 6.5 g de quelato 8% Fe en lugar de 8.0 g de quelato 6% Fe.

Su solución concentrada B utilizando Fetrilom Combi se prepara así (para 2 litros):

sulfato de magnesio        220.0 g
Fetrilom Combi                 12.0 g
quelato 8% Fe                     6.5 g
ácido borrico                      1.2 g

La ley del superfosfato triple que Ud. consiguió tiene 1% más de P₂O₅ y menos calcio como CaO. También puede usarlo (175 g/5 L solución concnetrada A). Si el agua que Ud. dispone para preparar la solución nutritiva es pobre en calcio (menos de 80 mg/L), entonces también tendría que preparar aparte una solución concentrada de nitrato de calcio. La cantidad a pesar y de aplicar dependerá del contenido de calcio en el agua.

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Saludos desde Panamá esperando que este año se presente mejor para todos Uds., Les escribo pidiéndoles su comprensión y  brinden su asesoría en lo siguiente: tuve un pequeño traspiés con la germinación de las semillas; el problema se presentó después de rociar la solución nutritiva La Molina diluida de acuerdo a las indicaciones (2.5 ml de solución A y 1.0 ml de solución B por litro).  Se empezaron a doblar las primeras hojas del cuello y se volvieron amarillas.  Uilizamos bandejas y como sustrato perlita. Las semillas utilizadas fueron de la variedad Romana de Asgrow y vienen peletizadas. Para rociar la solución se utiliza un pequeño aspersor casero que tiene casi las misma salida de gotas (en cantidad y grosor) que una botella para rociar agua; la aplicación no es directa, se hace desde arriba de manera que el agua no cae directamente sobre las plántulas. El pH de la solución no mayor de 5.8.

En estos momentos he reiniciado la siembra. Les agradeceré mucho si me pueden decir si cometí algún error o cómo saber que las semillas están en buenas condiciones.

Eduardo Morzán
Panamá.
emorzan@sinfo.net
 
Ud. ha seguido los pasos correctamente. Sin embargo, tenga en cuenta la siguiente sugerencia.
El riego con la solución nutritiva a media concentración se inicia cuando aparece la primera hoja verdadera (hoja de forma diferente a las primeras hojas del cotiledón) y se debe aplicar unos días (3 ó 4 días), luego proseguir el riego con la solución nutritiva a la concentración normal (5 ml de solución A y 2 ml de solución B por litro de agua).

El doblado del tallo podría deberse a un alargamiento de éste, provocado tal vez por una falta de luz. El tallo de la lechuga es muy corto, la pequeñas hojas deben verse arrocetadas (juntas) y a nivel del sustrato.  Para verificar la germinación o viabilidad de las semillas realice pruebas de germinación. Siembre un determinado número de semillas y, luego de unos días (una semana), cuente cuántas germinaron.

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He estado estudiando la solución nutritiva La Molina ya que la quiero utilizarla para producir  lechugas en un sistema flotante, y he observado que sólo contiene 1.0 ppm de hierro. También he observado que en otras publicaciones sobre producción de lechugas, como la de Lynette Morgan, la concentración de hierro en la solución nutritiva no baja de 5.0 ppm.  Mi pregunta es si no hay algún error de tipografía o, cuál es el motivo de tan gran diferencia. Les agradeceré por la respuesta a mi incognita. Cordiales saludos,

Juan C. Bóbeda
Paraguay
jcbobeda@telesurf.com.py

Existen un gran número de soluciones nutritivas; cada una con diferentes concentraciones en macro y micronutrientes. En relación al hierro, algunas fórmulas contienen 0.5 mg de hierro por litro de agua (0.5 ppm) y las plantas desarrollan bien; por ejemplo, la conocida fórmula de Hoagland contiene 0.6 ppm. En cambio, otras fórmulas contienen concentraciones más altas como 2, 3 ó 5 ppm de hierro. Altas dosis de hierro pueden inducir una deficiencia de manganeso. En las diferentes pruebas que hemos realizado, se han obtenido buenos resultados con una concentración de 1 ppm. La ventaja de aplicar esta concentración, implica gastar menos quelato de hierro, el cual es un compuesto relativamente caro.

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Les agradezco los saludos y la pronta respuesta. Su confirmación del valor de 1.0 ppm de hierro en la fórmula La Molina nos es de suma utilidad ya que efectivamente, el costo del quelato de hierro es bastante elevado y, adicionalmente, en nuestro caso, es de muy difícil obtención ya que el mismo no se vende en Paraguay sino que debemos importarlo del Brasil o de la Argentina.

Quisiera informales que a partir del Viernes pasado estamos utilizando su fórmula en nuestros cultivos de lechuga flotante en tanques de 6 m x 34 m x 0.40 m. Esperamos que los resultados sean satisfactorios. Los mantendré informados. Adjunto unas fotos de nuestros cultivos. Muy cordiales saludos,

Juan C. Bóbeda  

Estoy estudiando la hidroponía con varios artículos que he encontrado; estoy investigando para un futuro planificar un proyecto sobre rosales; me parece que es un proyecto interesante. Así podré lograr
que mi madre deje de trabajar en casa de familias y tenga su propio negocio, pero tengo que mostrarle con hechos que el cultivo hidropónica funciona. 

Aparte de los rosales, puedo enseñarles a mis sobrinos a cultivar hortalizas y que se diviertan con la naturaleza. También tengo una tía de 72 años totalmente lúcida; ella tienne dos hectáreas pero las cultiva en suelo. Espero que Uds. me puedan ayudar.  

Maritza Márquez
Caracas, Venezuela. 
mmarketing@mixmail.com

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El cultivo de rosas bajo un sistema sin suelo puede resultar un buen proyecto. Le podemos adelantar que en países como Israel, Holanda, España, EEUU y Canadá existen invernaderos dedicados a la producción de rosas en sustrato (generalmente perlita) y con riego por goteo. La densidad del cultivo es de 5 a 10 plantas/m2. Los rendimientos fluctúan entre 100 a 400 flores/m2/año, según las variedades y las condiciones del cultivo. 

Pero antes de introducirse a la producción de rosas, sería conveniente que primero se familiarice con la técnica cultivando alguna hortaliza de rápido crecimiento, de esta forma tendría una mayor seguridad para implementar y ejecutar su proyecto. Desde ya le deseamos muchos éxitos. 


NUEVAS PUBLICACIONES  

Greenhouses for Homeowners and gardeners por John Bartok.  2001. Natural resource, Agriculture and Engineering Service. Nueva York. EEUU. 214 p. Informes: nraes@cornell.edu   http://www.nraes.org 

Home Hydroponic Gardens por Peggy Bradley y César Marulanda. 2001.   2da. e.d Global Hydroponics Network. Corvallis, Oregon, EEUU. 240 p.  Informes:  carbonq@carbon.org 

Hydroponic Capsicum Production por Lynette Morgan & Simon Lennard. 2000. Casper Publications. Australia. 128 p.  Informes: misdebra@onr.com 
http://www.practicalhydroponics.com 

Manual Práctico de Hidroponía por Alfredo Rodríguez-Delfín, Milagros Chang, Marilú Hoyos & Fernando Falcón. 2001. 2da edición. Centro de Investigación de Hidroponía y Nutrición Mineral. Universidad Nacional Agraria La Molina. Lima, Perú. 100 p. Informes:  redhidro@lamolina.edu.pe    http://www.lamolina.edu.pe/hidroponia   

Producción de cebolla (Allium cepa) en hidroponía con piedra pomez y cascarilla de arroz por Edwin Barreda R.  Tesis Ing. Agr.  Universidad Nacional de San Agustín. Arequipa, Perú. 54 p. Informes: redhidro@lamolina.edu.pe

PROXIMOS EVENTOS  

Abril 7, 21 y 28. 2001.  Curso Práctico de Hidroponía. Centro de Investigación de Hidroponía.  Universidad Nacional Agraria La Molina.  Informes:redhidro@lamolina.edu.pe 

Abril 15-18, 2001. International Symposium on Design and Environmental Control of Tropical and Subtropical Greenhouses. National Taiwan University. Taichung, Taiwan.  Informes: dsfong@ccms.ntu.edu.tw   http://www.ISHS-GH2001.tari.gov.tw 

Abril 26, 27 y 28, 2001. Segundo Congreso y Curso Mundial de Hidroponía. Toluca, México. Informes: anilusa@prodigy.net.mx    http://www.hidroponia.org.mx 

Mayo 01 – Junio 19, 2001. Planificación de redes de riego a presión. Centro de Entrenamiento, Shefayim. Israel. Informes: Embajada de Israel en cada país, e-mail: ashefaye@netvison.net.il 

Mayo 5, 12, 19 y 23. 2001.  Curso Práctico de Hidroponía. Centro de Investigación de Hidroponía. Universidad Nacional Agraria La Molina.  Informes:redhidro@lamolina.edu.pe 

Mayo 16 – Julio 4, 2001. Presurized Irrigation Systems. Shefayim Training Centre. Israel. Informes: Embajada de Israel en cada país, e-mail: ashefaye@netvison.net.il 

Mayo 29-31, 2001.  First Asia-Pacific Conference & Exhibition on Soilless Culture. Hydroponics & Organics - the Futuristic technologies for Growing Plants. Crawford Lane, Singapur.  Informes: aphmfra5@pacific.net.sg   http://www.soillessculture.bizcal.com 

Junio 2, 9, 16 y 23. 2001.  Curso Práctico de Hidroponía. Centro de Investigación de Hidroponía. Universidad Nacional Agraria La Molina.  Informes:redhidro@lamolina.edu.pe 

Junio 21-25, 2001. Fourth Hydroponic Merchants Association Exhibition and Conference. Sheraton Hotel, Laval, Canadá.  Informes: jc@hydromerchants.org  http://www.hydromerchants.org 

Junio-Julio, 2001. 8º Curso Master Hispanoamericano de Fertilizantes y Medio Ambiente. Departamento de Química Agrícola. Universidad Autónoma de Madrid. España. Informes: c.cadahia@uam.es     http://www.uam.es 

Julio 7, 14 y 21. 2001.  Curso Práctico de Hidroponía. Centro de Investigación de Hidroponía. Universidad Nacional Agraria La Molina.  Informes:redhidro@lamolina.edu.pe 

Julio 28 – Agosto 4, 2001. XIV International Plant Nutrition Colloquium. University of Hannover. Alemania. Informes: http://www.ipnc2001.uni-hannover.de

Julio 29 – Agosto 1, 2001. Biennal Conference and Trade Exhibiyion of the Australian Hydroponic & Greenhouse Association.  Mingara Recreational Club. NSW. Australia.  Informes: aushyd@olis.net.au   http://www.ahga.org.au 

Agosto 6, 7 y 8. 2001.  Curso Práctico Internacional de Hidroponía.  Centro de Investigación de Hidroponía.  Universidad Nacional Agraria La Molina.  Informes:Redhidro@lamolina.edu.pe   http://www.lamolina.edu.pe/hidroponia/cuarto_curso_practico.htm 

Agosto 14 – Setiembre 4, 2001. R & D in Fertigation management of Intensive Agriculture. Agricultural Research Organization. Israel. Informes: Embajada de Israel en cada país, e-mail: ashefaye@netvison.net.il 

Octubre 23 – Noviembre 20, 2001. Producción de hortalizas en diferentes condiciones ambientales. Centro de Entrenamiento, Shefayim. Israel. Informes: Embajada de Israel en cada país, e-mail: ashefaye@netvison.net.il 

Octubre 30 – Diciembre 4, 2001. R & D in Protected Crop Technologies. Israel. Informes: Embajada de Israel en cada país, e-mail: ashefaye@netvison.net.il 

Noviembre 16-17, 2001. 18th Annual Hydroponic Growers´ Conference. Rosen Plaza Hotel, Orlando, Florida, EEUU.  Informes. Cropking@cropking.com   http://www.cropking.com 

Diciembre 02- 18, 2001. Tecnología de Invernaderos. Centro de Entrenamiento, Shefayim. Israel. Informes: Embajada de Israel en cada país, e-mail: ashefaye@netvison.net.il 

Agosto 11 - 17, 2002. XXVI ISHS International Horticultural Congress. Pacific Agri-Food Research Centre. Toronto, Canadá.  Informes:   IHCreg@congresscan.com

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